Box-Behnken 响应面法优化管花肉苁蓉中毛蕊花糖苷的提取工艺研究
孔征1*,毛乐静1,霍仕霞2,苏娅1,姜萌1,闫明2(#1.新疆医科大学药学院,乌鲁木齐830011;2.新疆维维吾尔自治区维吾尔医药研究所,乌鲁木齐830049)
中图分类号 R284.2文献标志码 A文章编号1001-0408(2019)14-1970-05
DOI 10.6039/j.issn.1001-0408.2019.14.20
摘要目的:优化管花肉苁蓉中毛蕊花糖苷的提取工艺,为该药材的深入开发和综合利用提供参考。方法:采用高效液相色谱法对管花肉苁蓉中的毛蕊花糖苷进行含量测定。色谱柱为Inertsil-ODS-3V,流动相为甲醇-0.2%甲酸水溶液(40 ∶ 60,V/V),流速为1 mL/min,柱温为30 ℃,检测波长为330 nm,进样量为10 μL。以毛蕊花糖苷的提取率为考察指标,分别对浸泡时间、乙醇浓度、液料比、提取时间、提取次数进行单因素试验;根据上述试验结果采用Box-Behnken 响应面法对乙醇浓度、液料比、提取时间等条件进行优化,并对优化后的提取工艺进行验证试验。结果:毛蕊花糖苷检测质量浓度的线性范围为18.65~932.4 μg/mL。最优提取工艺为乙醇浓度63%、液料比8 ∶ 1(mL/g)、浸泡2 h、提取时间1.5 h、提取2 次。3 次平行验证试验所得毛蕊花糖苷的提取率分别为78.21%、76.95%、79.34%,与预测值76.76%的相对误差分别为1.89%、0.25%、3.36%。结论:优化所得管花肉苁蓉中毛蕊花糖苷的提取工艺稳定、可行,适用于该化合物的提取。
关键词:管花肉苁蓉;毛蕊花糖苷;响应面法;Box-Behnken 设计;提取工艺;优化

管花肉苁蓉为列当科植物管花肉苁蓉[Cistanche tubulosa(Schenk)R. Wight]的干燥带鳞叶的肉质茎,性 温、味甘咸,为补肾壮阳、润肠通便之要药,是中亚地区及新疆特有的药用植物,主要分布于南疆塔克拉玛干沙漠边缘地区[1]。管花肉苁蓉收载于 2015 年版《中国药典》(一部)[2],其主要功能成分为苯乙醇苷类化合物[3]。近年来研究发现,管花肉苁蓉中的苯乙醇苷类化合物在神经保护[4]和延缓神经退行性疾病[4-5]方面具有良好的开发前景,现已成为研究的热点之一。毛蕊花糖苷为苯乙醇苷类化合物中的活性成分之一,本课题组前期药效评价实验结果表明,毛蕊花糖苷对神经细胞具有保护作用[4]、对东莨菪碱所致小鼠学习记忆获得性障碍具有改善作用[5]、对 D-半乳糖致衰老模型小鼠的氧化损伤具有抑制作用[6]。毛蕊花糖苷在管花肉苁蓉中的含量约为 0.05~8%[7],对其进行开发利用具有很大的药用前景。药效学实验表明,毛蕊花糖苷具有多靶点作用,有望开发成保护脑神经、改善记忆的脑病药物[8-9]。
Box-Behnken响应面设计法是可靠的实验设计以及分析方法,可通过对过程的回归拟合和响应曲面、等高线的绘制来计算出响应于各因素水平的响应值 ,是解决多变量问题的一种有效的统计方法[10]。鉴于此,本研究采用该法优化管花肉苁蓉中毛蕊花糖苷的提取工艺,为管花肉苁蓉的深入开发和综合利用提供参考。
1 材料
1.1 仪器
LC-20AT型高效液相色谱仪,包括LC-20AB型二元泵、SPD-M20A型二极管阵列检测器、CBM-20A型系统控制器、CTO-20A型柱温箱、SIL-20A型自动进样器(日 本Shimadzu公司);SQP-QUINTIX 35-1 CN型万分之一分析天平[赛多利斯科学仪器(北京)有限公司];DZTW型恒温电热套(北京市永光明医疗仪器有限公司)。
1.2 药品与试剂
管花肉苁蓉炮制片(新疆维吾尔自治区和田苁蓉堂2015 年秋收炮制片,批号:20150806,毛蕊花糖苷含量:≥3.79%;将管花肉苁蓉炮制片用药锤敲碎,粉碎机粉碎后过四号筛,即得管花肉苁蓉粉末,备用);毛蕊花糖 苷 对 照 品(中 国 食 品 药 品 检 定 研 究 院 ,批 号 :111530-201208,纯度:92.5%);甲醇为色谱纯,甲酸、乙醇等为分析纯,水为纯化水。
2 方法与结果
2.1 毛蕊花糖苷的含量测定
采用高效液相色谱法(HPLC)测定。 2.1.1 色谱条件 色谱柱:Inertsil ODS-3V(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相:甲醇-0.2%甲酸水溶液(40 ∶ 60, V/V);流速:1 mL/min;柱温:30 ℃;检测波长:330 nm;进样 量 10 μ L。 在 上 述 色 谱 条 件 下 ,取“2.1.2”“2.1.3” “2.1.4”项下溶液进样测定,色谱图见图1。
2.1.2 对照品溶液的制备
取毛蕊花糖苷对照品适量,精密称定,置于10 mL棕色量瓶中,加50%甲醇溶解并稀释至刻度,得每1 mL含毛蕊花糖苷0.932 4 mg的对照品溶液。
2.1.3 供试品溶液的制备
准确称取管花肉苁蓉粉末100 g,按液料比8 ∶ 1(溶剂体积 ∶ 粉末质量,mL/g,下同)加入63%乙醇,浸泡2 h,然后置于100 ℃恒温水浴锅中回流提取2次,每次1.5 h,趁热滤过,放冷,合并提取液,精密量取提取液 1 mL 至 25 mL 量瓶中,加 50%甲醇定容,即得。
2.1.4 阴性对照溶液的制备
分别以 50%甲醇与 63%乙醇作为阴性对照溶液。
2.1.5 方法学考察
精密量取“2.1.2”项下对照品溶液0.2、0.5、1、2、3、5、10 mL,分别置于 10 mL 量瓶中,加50%甲醇定容至刻度,摇匀,用0.45 μm微孔滤膜滤过, 按“2.1.1”项下色谱条件测定。以对照品溶液质量浓度(x)为横坐标、峰面积(y)为纵坐标进行线性回归,得回归方程为y=19 952x-218 412(r=0.999 8),表明毛蕊花糖苷检测质量浓度的线性范围为 18.65~932.4 μg/mL。以信噪比10 ∶ 1、3 ∶ 1测得定量限、检测限分别为0.229 6、 0.071 8 μg/mL。方法学考察结果显示,精密度[毛蕊花糖苷峰面积的RSD为0.57%(n=6)]、稳定性[毛蕊花糖苷峰面积的RSD为1.38%(n=6)]、重复性[毛蕊花糖苷峰面积的RSD为0.87%(n=6)]、加样回收率[毛蕊花糖苷低、中、高质量浓度的平均加样回收率依次为 99.6%、100.5%、100.7%,RSD 分别为 2.55%、0.83%、0.44% (n=9)]均符合2015年版《中国药典》(四部)要求[11]。
2.2 提取方法
准确称取管花肉苁蓉粉末,按一定液料比加入适宜浓度的乙醇,浸泡一定时间后,置于 100 ℃恒温水浴锅中回流提取数次,趁热滤过,放冷,合并提取液,精密移取提取液 1 mL至 25 mL 量瓶中,以 50%甲醇定容后,取样 10 μL,按“2.1.1”项下色谱条件进样测定,按标准曲线法计算毛蕊花糖苷含量。另取管花肉苁蓉粉末,采用2015年版《中国药典》(一部)项下方法[2]进行含量测定, 并通过以下公式计算毛蕊花糖苷提取率[12]:提取率(%)={[提取液体积(mL)×提取液含量(mg/mL)]/[药材质量(g)×药材含量(mg/g)]}×100%。 2.3 单因素试验在管花肉苁蓉苯乙醇苷类成分乙醇回流提取的过程中,浸泡时间、乙醇浓度、提取时间、液料比、提取次数等因素对提取效果有重要影响[13-14]。因此本研究以毛蕊花糖苷提取率为考察指标,对上述因素进行考察。 2.3.1 浸泡时间 称取管花肉苁蓉粉末100 g,共5份,固定提取时间为1 h、液料比为10 ∶ 1、溶剂浓度为60%、提取次数为1次,分别对浸泡时间0、2、8、12、24 h进行考察,结果见图2A。由图2A可见,当浸泡时间≥2 h,毛蕊花糖苷的提取率基本趋于稳定,综合考虑提取效率,最终确定最佳浸泡时间为2 h。 2.3.2 乙醇浓度 称取管花肉苁蓉粉末100 g,共4份,


